
货号:Q2513P
存储条件:4-30℃保存
产品简介
Lablead HP系列离⼦交换介质以⾼刚性琼脂糖为基质,以 Q 为配基,具有粒径小、反压低、分辨率⾼的特点,能很好的⽤于重组蛋⽩、抗体、核酸、病毒及类病毒颗粒、多糖等⽣物分⼦的分离纯化。
产品参数
产品名称 | Xtrap Q HP |
基质 | 高刚性琼脂糖 |
粒径范围/μm | 45μm |
官能团 | -CH2N+ (CH3 )3 |
离子载量 | 140~200μmolCl- /mL |
推荐流速 | 60~3750px/h |
最大耐压 | 0.3MPa |
pH稳定性 | 4~13(⼯作),3~14(CIP) |
储存 | 20%乙醇 |
操作说明
将填料填装到层析柱中,根据样本量和填料载量选择合适的层析柱和柱⾼。
1. 缓冲液准备
具体的缓冲体系应根据⽬标蛋⽩的稳定性和等电点、离⼦交换介质的种类进⾏筛选和优化。
建议使⽤缓冲液:
平衡缓冲液:50 mM Tris-HCl,pH8.0
洗脱缓冲液:50 mM Tris-HCl+1M NaCI,pH8.0
2. 样品准备
为了避免堵塞层析柱,样品应经离⼼或微滤(0.45μm)处理。
3. 样品纯化
1)平衡:⽤ 0.5~1CV 洗脱缓冲液进⾏预平衡,再⽤ 5~10CV 的平衡缓冲液平衡层析柱,⾄流出液电导和pH不变(与平衡液⼀致);
2)进样:样品缓冲液应尽可能与平衡液一致;
3)淋洗:继续用平衡缓冲液淋洗至基线;
4)洗脱:可以根据实际情况采取提⾼盐浓度或改变流动相pH的⽅法依次洗脱吸附于层析介质上的样品;
5)再生∶每次层析之后可⽤0.5M~2M NaCl清洗层析柱,除去强结合的蛋⽩;
6)CIP:0.5M NaOH,15min,碱洗后⽤⾼盐迅速将pH冲洗⾄中性,然后⽤纯⽔冲洗掉再保存柱子。
4. 在位清洗及储存
4.1 在位清洗
介质使⽤数次(具体次数与原料的种类和来源及实验要求有关)后,需要对介质进⾏在位清洗;
1)对于通过离⼦键强结合的蛋⽩,可⽤3CV 2M NaCl 清洗,并⽤ 3 CV 以上的去离⼦⽔清洗;
2) 对沉淀蛋⽩、疏⽔性结合的蛋白、脂蛋白,可⽤ 0.2~0.5M NaOH 清洗(与层析介质接触时间1~2 小时),并用5 CV 以上平衡液和 3 CV 以上的去离子水清洗;
对强疏⽔性结合的蛋⽩、脂蛋⽩和脂类物质,可用5 CV以上的50%⼄醇或 30%异丙醇清洗,6M盐酸胍或者8M尿素清洗,并⽤ 5CV 以上的去离⼦⽔清洗;也可⽤含⾮离⼦表⾯活性剂的碱性或酸性溶液清洗,如⽤ 0.1%〜0.5%的 Triton X-100 + 0.1 M 乙酸清洗1-2小时,并⽤5 CV 以上的 50%⼄醇冲洗去除去污剂,然后⽤ 5 CV 以上的纯⽔冲洗(使⽤⾼浓度的有机溶剂时,为了避免产⽣⽓泡,应采⽤逐步增加有机溶剂浓度的⽅法)。
4.2 储 存
2~30°C下 20% ⼄醇中保存(4°C下有利于⻓期保存);层析柱中的介质可⽤ 20% 的⼄醇冲洗后保存于 2~30°C。
注:在装柱、使⽤和保存柱⼦的时候,要避免柱⼦流⼲或密封不严,防⽌⽓泡进⼊。