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  • 2xLab SuperHiFi hotstart mix(货号:T1214)
  • 2xLab SuperHiFi hotstart mix(货号:T1214)

    -
    • ¥0.00
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    • 试剂规格:
    • 1ml
CAS:
-

货号:T1214

存储条件-20℃ 保存,24个月有效

 

产品说明

2xLab SuperHiFi hotstart mix是即用型2×预混合溶液,包含Lab SuperHiFi hotstart DNA Polymerase、dNTPs和精心优化的反应缓冲液,只需加入模板、引物和水即可进行高保真PCR反应。Lab SuperHiFi hotstart DNA Polymerase使用抗体法进行封闭,室温下酶活被完全抑制, 95℃加热30 s即可完全释放活性,从而减少非特异性扩增。

 

适用范围 本产品适用于以基因组DNA、cDNA、质粒以及粗品为模板的 PCR反应。

 

使用说明

1、反应体系

试剂

使用量

2xLab SuperHiFi hotstart mix a

25 ul

上游引物(10 μM)

1 ul

下游引物(10 μM)

1 ul

模板DNAc

X ul

ddH2 O

up to 50 ul

a.当扩增片段 GC 含量 >60% 且优化条件也无法正常扩增时,推荐调整 PCR 程序,程序推荐:Touchdown PCR(降落 PCR)程序。

 

模板用量:

基因组DNA10~200 ng

质粒或病毒DNA10 pg~50 ng

cDNA*1~20 μl

粗品1~5 μl (不超过PCR反应总体积的1/10)

注:此处推荐量为LABLEAD逆转录产物的使用体积,若使用其他品牌逆转录试剂,请根据PCR结果自行调整cDNA体积,防止其抑制PCR扩增。

 

 

反应程序1(三步法)

步骤

温度

时间

循环

预变性b

95℃

3~5 min


变性

95℃

10 s

30~35 Cycles

退火c

55~72℃

10 s

延伸d

72℃

30 s/kb

终延伸

72℃

5 min


b.对于普通模板,预变性可缩短至30~60 s;对于复杂模板,例如高GC序列,推荐延长预变性时间到3~5 min以充分变性;大肠杆菌菌落 PCR :建议将预变性调整10 min,无需预裂解即可高效扩增;酵母菌菌落PCR:无需调整预变性时间,但需要对酵母菌进行预裂解。建议使用以下预裂解方式:向酵母菌中添加终浓度20 mM的NaOH后95℃预裂解10 min,或将酵母菌使用液氮反复冻融2~5次;

c.根据引物Tm值设置退火温度。如引物Tm值≥72℃,可删除退火步骤,直接进行后续的延伸步骤(两步法PCR)。如果需要,可以建立一个温度梯度寻找引物与模板结合的最适温度。此外,退火温度直接决定扩增特异性。如发现扩增特异性差,可适当提高退火温度;

d.对于大多数模板,30 s/kb即可有效扩增;对于一些复杂模板,可延长延伸时间至30~60 s/kb。

 

反应程序2(两步法)

步骤

温度

时间

循环

预变性

95℃

3~5 min


变性

95℃

10 s

30~35 Cycles

退火&延伸

65~68℃

30 s/kb

终延伸

72℃

5 min


. 通常情况下使用两步法和三步法进行 PCR 扩增,性能无显著差异,可以根据操作习惯自行选择。但对于一些复杂模板(如长片段,Tm 分布不均匀 , 特殊结构模板),可以尝试两步法或者Touchdown PCR(降落 PCR)法。此外,使用质粒为模板进行点突变时,也建议使用两步法。

 

 

Touchdown PCR(降落PCR)法:

步骤

温度

时间

循环

预变性

95℃

3~5 min


变性

95℃

10 s

30~40 Cycles

退火

68℃

(-0.2℃/cycle)

15 s

延伸

72℃

30 s/kb

终延伸

72℃

5 min


注:该程序仅供参考,Touchdown PCR(降落PCR)有多种程序可灵活调整, 请根据实验需求与习惯自行决定是否采用。

 

注意事项

1. 请不要使用含尿嘧啶的引物和模板。

2. Lab SuperHiFi hotstart DNA Polymerase具有较强的校正活性,产生的扩增产物是平末端,如果用于下一步克隆实验,建议使用平末端 克隆。如果扩增产物需要用于TA克隆,加A之前须先进行DNA纯化。

3. 为了提高扩增成功率和产量,请使用高质量的模板。

 

 


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