货号:F2507S
存储条件:-20°C
同裂酶:Esp3I
注:同裂酶对于不同的甲基化修饰可能具有不同敏感性。
产品组份
组分 | 规格 |
BsmBI (10 U/μl) | 100 μl |
10× HN Buffer | 1 ml |
产品说明
BsmBI属于Type IIs 型限制酶,可识别非回文序列,并在识别序列之外进行切割,常用于Golden Gate 组装。经过优化的反应Buffer使BsmBI最大限度发挥功能,同时反应缓冲液包含重组白蛋白,其可增强多种酶的稳定性。
建议反应条件
1 × HN 缓冲液;55℃温育;参照“DNA 酶切流程”配制反应体系。
失活条件:80℃温育 20 min。
活性定义
1 活性单位 (U) 是指在 50 μl 反应体系中, 55℃ 1 h 内完全酶切 1 µg λDNA 所需的酶量。
质量控制
超长时间温育检测
最适反应温度下,将 10 U BsmBI 与 1 μg λDNA 共同温育 3 h, 未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解,延时 酶切可能出现星号活性。
酶切 - 连接 - 再酶切检测
最适反应温度下,使用 10 U BsmBI 消化底物,回收酶切产物。 在 22℃下使用适量 T4 DNA Ligase (Fast) 可以将酶切产物重新连接。 将连接产物再次回收后,使用相同的内切酶可以重新切开连接产物。
DNase 残留检测
将 10 U BsmBI 与双链 DNA 底物在 37℃温育 16 h,通过 DNA 电泳检测双链 DNA 底物无变化。
使用方法
1. DNA 酶切流程
① 在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系:
ddH2O 10× HN Buffer 底物 DNAa BsmBI (10 U/μl) Total | up to 50 μl 5 μl 1 μg 1 μl 50 μl |
a. DNA 底物中应不含苯酚、氯仿、乙醇、 EDTA、洗涤剂或高浓度盐,否则将会影响 BsmBI 酶活性;
② 轻柔吸打或轻弹管壁以混匀(切勿涡旋),然后瞬时离心以收集挂壁液滴;
③ 55℃温育 15 min~1 h,一般推荐0.5ul-1ul酶/μg质粒DNA、1-2ul酶/μg 基因组 DNA,温浴1 h,如需过夜酶切反应, 请将酶量调整至1 U; ④ 80℃温育 20 min 即可使酶失活,停止反应,或者通过吸附柱或苯酚/氯仿纯化终止反应。
2. 注意事项
① 反应体系中加入的酶体积不应超过总体积的 10%,避免酶中过多的甘油引起星号活性;
② 限制性内切酶存储缓冲液中的添加剂(例如甘油、盐)与底物溶液中的污染物 (例如盐、 EDTA 或乙醇等) 相同,反应体积越小,酶切反应抑 制效应越强。
3. 小体积推荐加样体系
DNA | 0.1 μg | 0.5 μg |
BsmBI (10 U/μl) | 1U | 5U |
10× HN Buffer | 1ul | 2.5ul |
ddH2O | up to 10 μl | up to 25 μl |
Total | 10ul | 25ul |
注:为避免蒸发,10 μl 反应体系的孵育时间不应超过1h。
不同 DNA 中的酶切位点数量
λDNA | ΦX174 | pBR322 | pUC57 | pUC18/19 | SV40 | M13mp18/19 | Adeno2 |
14 | 0 | 1 | 2 | 2 | 0 | 1 | 21 |
甲基化修饰影响
Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
无影响 | 无影响 | 剪切受阻 | 无影响 | 剪切受影响 |