货号:F4514S
储存条件:-20℃
同裂酶:KasI, DinI, EgeI, EheI, Mly113I, NarI, PluTI, SfoI;注:同裂酶对于不同的甲基化修饰可能具有不同敏感性。
产品组成
组分 | 规格 |
SspDI (KasI)(10U/μl) | 25 μl |
10× LabFD Buffer | 1 ml |
10× LabFD color Buffer | 1 ml |
产品简介
SspDI属于常规限制酶系列,可识别G^GCGCC序列。不同于LabFD系列快速内切酶,SspDI需要较长时间酶切以实现DNA底物的完全切割,但该酶仍使用LabFD限制酶通用反应缓冲液LabFD Buffer,可实现双酶切。
建议反应条件
1×LabFD buffer;37℃温育;参照“DNA快速酶切流程”配制反应体系。
失活条件
80℃温育20 min。
活性定义
1 活性单位 (U) 是指在 50 μl 反应体系中,37℃ 1 h 内完全酶切1 μg pBR322所需的酶量。
质量控制
最适反应温度下,将10 U SspDI 与1 μg λDNA共同温育16 h,未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解。
最适反应温度下,使用10 U SspDI消化底物,回收酶切产物。在22℃下使用适量 T4 DNA Ligase (Fast)可以将酶切产物重新连接。将连接产物再次回收后,使用相同的内切酶可以重新切开连接产物。
使用方法
1) 在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系:
ddH2O | up to 50ul |
10×LabFD Buffer | 5ul |
底物DNAa | 1ug |
SspDI(10U/ul) | 1ul |
Total | 50ul |
a. DNA底物中应不含苯酚、氯仿、乙醇、EDTA、洗涤剂或高浓度盐,否则将会影响SspDI 酶活性;
2) 轻柔吸打或轻弹管壁以混匀(切勿涡旋),然后瞬时离心以收集挂壁液滴。
3) 37℃温育1 h~6 h
4) 80℃温育20 min 即可使酶失活,停止反应,或者通过吸附柱或苯酚/氯仿纯化终止反应。
1) 反应体系中加入的酶体积不应超过总体积的10%,避免酶中过多的甘油引起星号活性;
2) 限制性内切酶存储缓冲液中的添加剂(例如甘油、盐)与底物溶液中的污染物(例如盐、EDTA或乙醇等)相同,反应体积越小,酶切反应抑制效应越强。
不同DNA中的酶切位点数量
λDNA | ΦX174 | pBR322 | pUC57 | pUC18/19 | SV40 | M13mp18/19 | Adeno2 |
1 | 2 | 4 | 1 | 1 | 0 | 1 | 20 |
甲基化修饰影响
Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
无影响 | 无影响 | 剪切受阻 | 无影响 | 无影响 |
在不同反应缓冲液中的活性
LabFD™ Buffer | Thermo Scientific FastDigest Buffer | NEB rCutSmart®Buffer | Takara QuickCut™Buffer | |
活性 | 100% | <12.5% | 100% | <25% |
注:活性数据来自LABLEAD限制酶标准反应体系下的检测。