一管化、含去基因组成分、三代酶;反转录试剂盒
货号:F0202
储存条件:-20℃,有效期2年
产品组分 | 规格 |
All-in-One First-Strand Synthesis MasterMix | 400ul |
dsDNase | 50ul×2 |
10×dsDNase Buffer | 200ul |
Nuclease-Free Water | 1ml×2 |
产品简介:
All-in-One First-Strand Synthesis MasterMix 是一款高效、便捷、减少污 染的高质量一链 cDNA 合成试剂盒,包含 M-MLV GIII Reverse Transcriptase 及 其反应 Buffer、RNA 酶抑制剂、dNTPs, Oligo(dT)20VN 和随机引物等一链 cDNA 合成所需的所有组分,仅需加入 RNA 模板和水即可开始反应。由于该试剂盒 Oligo(dT)20VN 和随机引物是预混到逆转录酶里的,该逆转录试剂盒获得的 cDNA,下游可用于 qPCR。如果做普通 PCR 实验,推荐我公司生产的货号 F0202A 。
从细胞中提取的 RNA 往往存在基因组 DNA 污染,如果逆转录前不将其去除, 下游 qPCR 反应时基因组 DNA 与 cDNA 会同时被扩增(尤其当引物设计在同一外 显子上时),从而影响基因表达定量准确性。本试剂盒采用 dsDNase 高效去除基 因组 DNA 污染,dsDNase 能够特异性消化双链 DNA (dsDNA 或 DNA-RNA 杂 合链中的 DNA 链),并且具有热敏感性,在逆转录温度下即可快速不可逆地失活。 与传统使用 DNaseI 去除基因组 DNA 污染的方法相比,dsDNase 无需额外加入 EDTA 进行失活,不仅节省实验时间,而且降低了对逆转录反应的抑制。 可依据基因组污染严重程度选择采用去基因组 DNA 污染与反转录分开进行 的操作方法,或者去基因组污染与反转录一步法进行的操作方法。
使用方法:
针对基因组含量低的RNA样品(推荐方案)
①于冰上配制如下反应体系:
试剂 | 使用量 |
模板 RNAa | 50 ng~1ug |
All-in-One First-Strand Synthesis MasterMix | 4ul |
dsDNase | 1ul |
Nuclease-Free Water | To 20ul |
a. 推荐采用试剂盒提取的 RNA 作为模板
② 轻柔吸打混匀,瞬离;
③ 37℃温育2min,以去除基因组DNA污染;
④ 55℃温育15 min;
⑤ 反应结束后,85℃温育5 min以终止反应;注:若RNA中基因组DNA污染严重,可适当延长37℃温育时间至5 min。
⑥ 迅速将获得的 cDNA置于冰上,用于后续实验;或立即保存于-20°C。
针对基因组含量高 RNA 样品
1. 基因组 DNA 污染去除
①于冰上配制如下反应体系:
试剂 | 使用量 |
模板 RNAa | 50 ng~1ug |
10x DNase buffer | 1ul |
dsDNase | 1ul |
Nuclease-Free Water | To 10ul |
a. 推荐采用试剂盒提取的RNA作为模板。
② 轻柔吸打混匀,瞬离;
③ 37℃温育2 min,以去除基因组DNA污染;
注:若RNA中基因组DNA污染严重,可适当延长37℃温育时间至5 min。
④ 65℃温育2 min,使dsDNase失活,冰上放置。
2. 第一链cDNA合成
① 于冰上配制如下反应体系:
试剂 | 使用量(实验组) |
“实验 1”反应产物 | 10 μl |
All-in-One First-Strand Synthesis MasterMix | 4 μl |
Nuclease-Free Water | To 20 μl |
② 轻柔吸打混匀,瞬离;
③ 50℃温育15min;
注:若目标RNA不含Poly(A)结构,可预先25℃温育10min。
④ 反应结束后,85℃温育5min,以终止反应;
⑤ 将获得的 cDNA 溶液置于冰上,用于后续实验。
注:cDNA溶液置于-20℃储存,建议不超过1周;置于-80℃可长期储存。
注意事项
预混液中已经包含Oligo(dT)20VN和随机引物,不仅适用于包含Poly(A)结构的真核生物mRNA,也适用于不含Poly(A)结构的原核生物RNA、真核生物rRNA和tRNA等模板,但不适用于miRNA等小RNA模板。
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