产品货号:S1080
储存条件:2~8°C
一、产品简介
Strep-Tag II为8个氨基酸构成的短序列(WSHPQFEK) ,由于标签小,仅为1.06 KDa左右,不影响融合后蛋白质的结构和功能,不与重金属离子反应,不具有离子交换特性,也不会引起蛋白聚集。这些温和的纯化参数能,保持蛋白质的生物活性,首次纯化后无需去除Strep-TagII并仅经一步提取即可产出超过99%纯度的蛋白质。由于其高亲和力,单步纯化纯度高(优于His标签),纯化条件温和,蛋白两端均可融合等突出特点迅速得到了广泛应用。
Streptavidin标签亲和填料是将Steptactin偶联至高度交联的4%琼脂糖微球上,可用于各种表达系统,包括杆状病毒、哺乳动物细胞、酵母和细菌中含有Strep-Tag II和Twin Strep-Tag II蛋白纯化。适用于大部分蛋白质性质,方便蛋白质和蛋白质之间相互作用分析。
二、技术指标
性能 | |
基质 | 4%高度交联琼脂糖 |
配体 | Steptactin |
每毫升载量 | 3~5mg Twin Strep-tag II蛋白 |
微球粒径 | 45-165 pm |
最大流速 | 7500px/h |
pH稳定范围 | 3-12 |
化学稳定性 | 24h内可耐受6M盐酸胍,8M尿素,2MNaCl |
储存温度 | 含20 %乙醇的1XPBS 2~8°C存储 |
三、操作说明
Streptavidin标签亲和填料可以在实验室被填装到lablead中压层析柱中,以扩大产量。将填料填装到层析柱中,根据样本量和填料载量选择合适的层析柱和柱高。
3.1缓冲液的准备
所用水和缓冲液在使用之前建议用0.22μm或0.45μm滤膜过滤。
平衡缓冲液:
100mM Tris-HCl,150mM NaCl,1mM EDTA,pH8.0或PBS:20mM磷酸钠,280mM NaCl,6 mM氯化钾,pH7.4
洗脱缓冲液:
平衡液中加入50mM d-Biotin,100mM Tris-HCl,150mM NaCl,1mM EDTA,pH8.0。
3.2样品准备
样品在上样前建议离心或用0.22 um或0.45 um滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
3.3样品纯化
1) 用3~5CV的去离子水冲洗出储存缓冲液。
2) 使用至少5CV的平衡液平衡色谱柱。
3) 利用泵或样品环上样。注:样品的粘度增加使得即使样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。
4) 用平衡缓冲液冲洗柱子,直到紫外吸收达到一个稳定的基线(一般至少10 ~15CV)。
5) 使用5~10CV的洗脱液洗脱,收集洗脱液,即目的蛋白组分。
6) 介质洗脱结束后,用平衡液冲洗5~10CV,然后用纯水冲洗5-10CV,再用20%乙醇冲洗2个CV,置于2~8°C保存。
重要提示:如果使用Xtrap预装柱,可省略装柱步骤。
4在位清洗
4.1洗脱液为脱硫生物素时,
用5倍柱体积( CV )的去离子水清洗,用15 CV的含1mM HABA的平衡液再生,然后用30 CV的平衡液清洗。脱硫生物素被黄色溶液HABA取代,后者一旦与Streptactin复合即变为红色。HABA随后被平衡液除去,柱子可重新使用。
4.2洗脱液为D-生物素时,
用5 CV的去离子水清洗,用15CV 1MNaOH再生,然后用30 CV的平衡液清洗。