货号:T2116
储存条件:蓝冰运输,2-8°C 保存,有效期一年,使用前请轻轻混匀。
产品描述
Labfect Prime 具有非常卓越的转染性能,可高效转染绝大多数贴壁细胞,转染效率可高达 90%以上(Hela 细胞,EGFP 质粒)。LabfectPrime 功能强大,不仅可高效转染较大分子的质粒 DNA,还可高效转染 mRNA、siRNA、mimics 和各种小分子 DNA。与目前市场上常见的脂质体转染试剂不同,Labfect Prime 采用生物可降解材料配制,对细胞的毒性很低,转染后 24 小时细胞几乎无明显死亡。Labfect Prime 使用也非常方便,先将转染试剂与质粒 DNA 混合,再将转染试剂-DNA 复合物直接加入培养细胞中,血清不影响其转染效果,不必刻意添加或更换培养液,操作十分简便。Labfect Prime 适合于贴壁细胞的核酸转染,如需转染原代细胞,请选择 LabfectPM Prime 原代细胞核酸转染试剂盒。如需转染悬浮细胞,请选择 LabfectSP Prime 悬浮细胞核酸转染试剂盒。
产品优点
1、卓越的细胞转染性能:可高效转染多种贴壁细胞,转染效率在贴壁细胞中可高达90%以上;
2、转染功能强大,不仅可高效转染大分子质粒DNA,还可高效转染mRNA、siRNA、mimics和各种小分子DNA;
3、极低的细胞毒性:使用可降解生物材料,细胞毒性低,转染细胞死亡率不到10%,大大降低了因细胞毒性对实验结果的影响;
4、操作简便,可用于含血清培养基培养细胞的转染,转染前后不需要更换培养液。
操作步骤:
一、质粒DNA转染(以24孔板转染为例):
A. 细胞接种:
1. 转染前一天对细胞进行转接,每孔接种1.5-2.0×105个细胞,使转染时细胞密度为90%左右,且生长良好(非常重要);
2. 最好在转染开始之前更换新鲜的含血清培养基,以防转染后孵育阶段细胞密度太大、营养不足导致细胞死亡。
B. Labfect /DNA转染复合物制备(该步完成后应立即进行转染):
1. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,再加入适量的转染试剂,见附表。用移液器轻轻混匀后在室温静置5分钟。
2. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,并加入适量的溶液A,轻轻混匀,再加入适量的DNA,见附表。用移液器再次轻轻混匀
后在室温静置5分钟。
3. 将DNA-培养基混合物滴加至Labfect-培养基混合物中,用移液器轻轻混匀后在室温静置15~20分钟后,立即转染。注意: Labfect-培养基混
合物和DNA-培养基混合物的混合次序非常重要,切勿颠倒。
注意:离心管最好使用聚丙烯离心管。
C.转染:
1. 将步骤B制备的转染复合物滴加至培养基中,边加边轻轻晃动培养板以使复合物均匀分布。加完后,立即将培养板转入培养箱继续培养。
2. 培养12小时后即可观察,最佳观察或收获时间为24~48小时。
3. Labfect在完全培养基中仍有较高的转染效率,因此转染前后不需要换成无血清或低血清培养基。
二、siRNA转染(以24孔板转染为例):
A. 细胞接种:
1. 转染前一天对细胞进行转接,使转染时细胞密度为30-50%左右,且生长良好、无支原体污染(非常重要);
2. 最好在转染开始之前更换新鲜的含血清培养基,以防转染后孵育阶段细胞密度太大、营养不足导致细胞死亡。
B. Labfect /siRNA转染复合物制备 (该步完成后应立即转染):
1. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,并添加适量的转染试剂(见下表) 。用移液器轻轻混匀后在室温静置5分钟。
2. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,并添加适量的siRNA(见下表),用移液器轻轻混匀后在室温静置5分钟。
3. 将siRNA-培养基混合物滴加至Labfect-培养基混合物中,用移液器轻轻混匀后在室温静置15~20分钟后,立即转染。
C.转染:
1. 将步骤B制备的转染复合物滴加至培养基中,边加边轻轻晃动培养板。加完后,立即将培养板转入培养箱继续培养。
2. 37°C培养24-72h,检测基因抑制效果。如果需要,细胞培养4-6h时可以更换培养基,但不是必须。
3. Labfect Prime在完全培养基中仍有较高的转染效率,因此转染前后不需要换成无血清或低血清培养基。
注意事项:
1. 首次转染,请务必进行优化实验,如24孔板质粒转染,每孔质粒用量0.8ug,Labfect Prime可选择2.0ul、2.5ul、3.0ul、3.5ul进行优化。24孔板 siRNA转染,Labfect Prime用量2ul,siRNA用量可选10pmol、20pmol、30pmol、40pmol进行优化。
2. 在制备DNA或siRNA转染复合物时,应避免体系中存在血清,因血清会干扰Labfect与DNA或siRNA形成复合物。培养体系中尽量不要添加抗生素,抗生素会导致培养细胞死亡。
3. 溶液A仅用于质粒转染,RNA或siRNA转染不需加入溶液A。
4. 请注意质粒转染和siRNA转染时对细胞密度和转染试剂用量等条件的差异,不要混用同一条件。
5. 如果需要质粒稳转,请在转染24-48h后加入筛选培养基。
6. 本产品适合于质粒DNA、siRNA分别独立转染,如需质粒DNA、siRNA共转,请选用Labfect Prime核酸共转染试剂盒。
注意事项
本产品仅用于科研。
附表1: 质粒转染不同培养体系推荐初始转染条件
培养皿 | 96 孔板 | 48 孔板 | 24 孔板 | 12 孔板 | 6 孔板 | 10cm 皿 | |
培养基、试剂、DNA量
| 无血清培养基(μl) | 2×10 | 2×25 | 2×50 | 2×100 | 2×200 | 2×1000 |
溶液A(μl) | 0.4 | 1.0 | 2.0 | 4.0 | 8 | 40 | |
Labfect Prime (μl) | 0.5 | 1.3 | 2.5 | 5.0 | 10 | 50 | |
1 μg/μl plasmid (μl) | 0.16 | 0.4 | 0.8 | 1.6 | 3.2 | 16 | |
完全培养基(ml) | 0.10 | 0.25 | 0.50 | 1.0 | 2.0 | 10 |
附表2: siRNA转染不同培养体系推荐初始转染条件
培养皿 | 96孔板 | 48孔板 | 24孔板 | 12孔板 | 6孔板 | 10cm皿 | |
培养基、试剂、DNA量
| 无血清培养基(μl) | 2×10 | 2×25 | 2×50 | 2×100 | 2×200 | 2×1000 |
Labfect Prime (μl) | 0.4 | 1.0 | 2.0 | 4.0 | 8 | 40 | |
siRNA (pmol) | 4 | 10 | 20 | 40 | 80 | 400 | |
完全培养基(ml) | 0.10 | 0.25 | 0.50 | 1.0 | 2.0 | 10 |